Evaluation of the Extraction of Calabash Tree (Crescentia cujete L.) Colorant for Textile Products

Vista sencilla de ítem
dc.creatorLópez M. , Luis G.
dc.creatorRada M., David F.
dc.creatorGóngora D., Andrés F.
dc.creatorMorales M., Laura C.
dc.creatorOspina L., Maria C.
dc.date2022-05-09
dc.date.accessioned2025-10-01T23:52:46Z
dc.descriptionThe objective of this study was to evaluate the extraction of colorant from the pulp of the fruit of calabash tree (Crescentia cujete L.) obtained in Granada (Meta, Colombia). Such extraction was performed using three different solvents (water, sodium hydroxide, and ethanol) to determine (1) the solvent that offers the highest yield and the greatest stability in resistance tests applied to a textile product and (2) the metabolites present in the samples. For this purpose, the dye was extracted by the digestion method, where 150 g of pulp were placed in three different beakers, adding water, ethanol, and sodium hydroxide until a volume of 300 ml was reached over 20 minutes, 30 minutes, and 1 hour, respectively, at a constant agitation and a temperature of 75 °C. The residues were filtered and weighed. The samples thus obtained were used to dye 2x2-cm pieces of cotton, which were subjected to resistance tests with acids and alkalis, high temperatures, and detergent. The final color was determined by a colorimeter to obtain its coordinates in the CIEL*a*b* color space. Finally, by means of spectrophotometry and peaks in the absorbance spectrum plots, it was possible to study the presence of organic pigments in the samples. The NaOH solvent achieved the best performance in the resistance tests. In turn, the sample dyed with the colorant extracted using ethanol showed a total color difference of ΔE = 3.41, which was the lowest color loss in this study. The sample treated with NaOH exhibited peaks at 270–370 nm, indicating the presence of flavonoids; and that treated with ethanol, peaks at 665–700 nm, signaling the presence of saponins. According to the above, it is possible to extract a colorant from the calabash tree fruit, which makes it a potential agro-industrial raw material.en-US
dc.descriptionLa presente investigación tuvo como objetivo evaluar la extracción del colorante de la pulpa del fruto de totumo (Crescentia cujete L.) obtenido en el municipio de Granada, departamento del Meta. Para ello se usaron tres distintos solventes: agua, hidróxido de sodio y etanol, lo cual permitió determinar el colorante de mayor rendimiento, el más estable ante pruebas de resistencia aplicado en un producto textil y la determinación de metabolitos. Esto se logró mediante la extracción del colorante por el método de digestión, en donde se agregó 150 g de pulpa a tres vasos diferentes de precipitado, adicionando agua, etanol e hidróxido de sodio hasta alcanzar un volumen de 300 ml durante un tiempo de 20 minutos, 30 minutos y 1 hora, respectivamente, a una agitación y temperatura constante de 75 °C. Se filtraron y pesaron los residuos y, una vez obtenidas las muestras, estas se utilizaron para teñir fragmentos de algodón de 2 x 2 cm, los cuales se sometieron a pruebas de resistencia con ácidos y álcalis, altas temperaturas y detergente. El color final se determinó empleando el colorímetro para obtener las coordenadas del círculo cromático de la escala CIEL a* b*. Finalmente, mediante espectrofotometría, se logró, por medio de los rangos de longitud de onda, considerar la existencia de pigmentos orgánicos presentes en dichas muestras. Se evidenció que el NaOH fue el solvente de mayor rendimiento. La muestra teñida con colorante extraído con etanol dio una diferencia total de color ΔE = 3,41, considerándolo el de menor pérdida de color. Para la muestra con NaOH se obtuvo un rango de 270-370 nm, lo que indica presencia de flavonoides y, para el extracto con etanol se obtuvo un rango de 665-700 nm, lo cual indica presencia de saponinas. De acuerdo con lo anterior, es posible efectuar la extracción de color a partir del totumo, lo cual convierte este producto en una materia prima con potencial agroindustrial.es-ES
dc.formatapplication/pdf
dc.formatapplication/zip
dc.formattext/xml
dc.formattext/html
dc.identifierhttps://revistas.itm.edu.co/index.php/tecnologicas/article/view/2165
dc.identifier10.22430/22565337.2165
dc.identifier.urihttps://hdl.handle.net/20.500.12622/7808
dc.languagespa
dc.publisherInstituto Tecnológico Metropolitano (ITM)es-ES
dc.relationhttps://revistas.itm.edu.co/index.php/tecnologicas/article/view/2165/2389
dc.relationhttps://revistas.itm.edu.co/index.php/tecnologicas/article/view/2165/2390
dc.relationhttps://revistas.itm.edu.co/index.php/tecnologicas/article/view/2165/2391
dc.relationhttps://revistas.itm.edu.co/index.php/tecnologicas/article/view/2165/2392
dc.relation/*ref*/F. O. Balogun; S. Sabiu, “A Review of the Phytochemistry, Ethnobotany, Toxicology, and Pharmacological Potentials of Crescentia cujete L. (Bignoniaceae)”, Evid. Based Complement. Alternat. Med., vol. 2021, pp. 1-15, Jul. 2021. https://doi.org/10.1155/2021/6683708
dc.relation/*ref*/R. Bernal; G. Galeano; A. Rodríguez; H. Sarmiento; M. Gutiérrez, “Nombres Comunes de las Plantas de Colombia”, 2017. http://www.biovirtual.unal.edu.co/nombrescomunes/es/resultados/ncientifico/Crescentia%20cujete/
dc.relation/*ref*/J. Arango-Ulloa; A. Bohorquez; M. C. Duque; B. L. Maass, “Diversity of the calabash tree (Crescentia cujete L.) in Colombia”, Agrofor. Syst., vol. 76, no. 3, pp. 543-553, Jul. 2009. https://doi.org/10.1007/s10457-009-9207-0
dc.relation/*ref*/Z. Calle Díaz; E. Murgueitio Restrepo. “Árboles nativos para predios ganaderos’’. Especies focales del Proyecto Ganadería Colombiana Sostenible. Cali, Colombia, CIPAV, 2020. https://elti.yale.edu/sites/default/files/rsource_files/arboles_nativos_para_predios_ganaderos.pdf
dc.relation/*ref*/DNP, 2016. https://www.dnp.gov.co:443/Paginas/Colombianos-botan-9,76-millones-de-toneladas-de-comida-al-a%C3%B1o.aspx
dc.relation/*ref*/Ministerio de la Protección Social de Colombia. Vademecum colombiano de plantas medicinales. Bogotá, D.C., 2008. https://www.minsalud.gov.co/sites/rid/Lists/BibliotecaDigital/RIDE/VS/PP/SA/vademecum-colombiano-plantas-medicinales.pdf
dc.relation/*ref*/R. C. G. Jimenez Garzón, ‘’Cinética de degradación de colorantes textiles de diferentes clases químicas por hongos y bacterias’’, p. 137, 2009. http://hdl.handle.net/10554/8222
dc.relation/*ref*/0223. Grupo Media Atlantico S.A., “Colorantes en polvo a partir de desechos agrícolas o agroindustriales”, 0223. Sep. 2019. https://www.0223.com.ar/nota/2019-9-16-17-9-0-el-inti-patento-una-tecnica-que-permite-obtener-colorantes-naturales-a-partir-de-desechos
dc.relation/*ref*/A. P. Barrera Pardo, “Fisiología de semillas y propagación sexual de Crescentia cujete L. (totumo)”, (Tesis de pregrado), Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, 2008. https://repository.javeriana.edu.co/bitstream/handle/10554/56150/SEMIPROPA.pdf?sequence=1
dc.relation/*ref*/C. E. Recalde Cedeño, “Evaluación de las características físico-químicas de Crescentia cujete (totumo) de diferentes zonas de la provincia de los ríos, con la finalidad de proponer su aprovechamiento agroindustrial”, 2015. http://repositorio.uteq.edu.ec/handle/43000/294
dc.relation/*ref*/S. Shadi; M. Hamed; P. T. Chin; M. G. Hasanah; B. Sara; S. Alireza, “Optimisation of ultrasound-assisted extraction of oil from papaya seed by response surface methodology: Oil recovery, radical scavenging antioxidant activity, and oxidation stability’’, vol. 172, pp. 7-17, 2015.
dc.relation/*ref*/Y. Qin et al., “Effects of pH on light absorption properties of water-soluble organic compounds in particulate matter emitted from typical emission sources”, Journal of Hazardous Materials, vol. 424, pp. 127688, feb. 2022. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2021.127688
dc.relation/*ref*/J. E. Devia Pineda, “Proceso para obtener colorante a partir de la semilla del aguacate”, Revista Universidad EAF. vol. 47, no. 135, pp. 36-43, 2005. https://repository.eafit.edu.co/bitstream/handle/10784/17174/document%20-%202020-08-15T160756.743.pdf?sequence=2&isAllowed=y
dc.relation/*ref*/A.A. Castro Bustillos; G. Arroyo Figueroa, “Teñido de Fibras Naturales con Colorantes Naturales”, Jóvenes En Cienc., vol 2, no. 1, pp. 1134-1138, 2016. http://repositorio.ugto.mx/handle/20.500.12059/4747
dc.relation/*ref*/UNE, “Textiles - Tests for colour fastness - Part E06: Colour fastness to spotting: Alkali (ISO 105-E06:2006)”. 2006. https://www.une.org/encuentra-tu-norma/busca-tu-norma/norma/N0039017
dc.relation/*ref*/H. G. Cuastumal Canacuan; B. L. Valencia Murillo; L. E. Ordóñez Santos, “Efectos de los tratamientos térmicos en la concentración de vitamina C y color superficial en tres frutas tropicales”, Rev. Lasallista Investig., vol. 13, no. 1, pp. 85-93, Jun. 2016. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1794-44492016000100008&lng=en&nrm=iso&tlng=es
dc.relation/*ref*/M. Ramírez; N. Y. Rojas Aguilar; L. J. Correa Higuera, “Obtención de un colorante natural alimentario de mora de Castilla (Rubus glaucus benth)”, Cienc. En Desarro., vol. 2, no. 2, pp. 115-130, Jun 2009. https://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencia_en_desarrollo/article/view/260
dc.relation/*ref*/C. Burgess, “Chapter 1 - The Basis for Good Spectrophotometric UV–Visible Measurements”, en UV-Visible Spectrophotometry of Water and Wastewater (Second Edition), O. Thomas y C. Burgess, Eds. Elsevier, 2017, pp. 1-35. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63897-7.00001-9
dc.relation/*ref*/L. Wei; Y. Yang; D. Sun, “Rapid detection of carmine in black tea with spectrophotometry coupled predictive modelling”, Food Chem., vol. 329, pp. 127177, Nov. 2020. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127177
dc.relation/*ref*/J. Lakatos-Szabó; I. Lakatos, “Effect of sodium hydroxide on interfacial rheological properties of oil–water systems”, Colloids Surf. Physicochem. Eng. Asp., vol. 149, no. 1-3, pp. 507-513, Abr. 1999. https://doi.org/10.1016/S0927-7757(98)00732-8
dc.relation/*ref*/J. E. Espitia-Baena; H. del R. Duran-Sandoval; J. Fandiño-Franky; F. Díaz-Castillo; H. A. Gómez-Estrada, “Química y biología del extracto etanólico del epicarpio de Crescentia cujete L. (totumo)”, Rev. Cuba. Plantas Med., vol. 16, no. 4, pp. 337-346, 2011. https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?IDARTICULO=36094
dc.relation/*ref*/R. A. Prajapati; G. C. Jadeja, “Natural food colorants: Extraction and stability study”, Mater. Today Proc., Ene. 2022. https://doi.org/10.1016/j.matpr.2021.12.151
dc.relation/*ref*/H. Monteiro; B. Moura, “Life cycle energy and carbon emissions of colorants extraction from Hibiscus sabdariffa”, Energy Rep., vol. 8, pp. 277-283, Jun. 2022. https://doi.org/10.1016/j.egyr.2022.01.034
dc.relation/*ref*/M. Arici; S. Karasu; M. Baslar; O. S. Toker; O. Sagdic; M. Karaagacli, “Tulip petal as a novel natural food colorant source: Extraction optimization and stability studies”, Ind. Crops Prod., vol. 91, pp. 215-222, Nov. 2016.
dc.relation/*ref*/B. C. Ejelonu; A. A. Lasisi; A. G. Olaremu; O. C. Ejelonu, “The chemical constituents of calabash (Crescentia cujete)”, Afr. J. Biotechnol., vol. 10, no. 84, pp. 19631-19636, Dic. 2011. https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/view/99140
dc.relation/*ref*/L. E. Ordoñez-Santos; J. Esparza-Estrada; P. Vanegas-Mahecha, “Potencial agroindustrial del epicarpio de mandarina como alternativa de colorante natural en pan”, TecnoLógicas, vol. 23, no. 48, pp. 17-29, May. 2020. https://doi.org/10.22430/22565337.1465
dc.relation/*ref*/C. A. Guerrero Eraso, “Inhibición de la actividad enzimática de la polifenol oxidasa extraída del banano (Cavendish valery) mediante sistemas bifásicos acuosos con isoespintanol y ácido ascórbico”, (Tesis de Maestría), Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, 2009.
dc.relation/*ref*/M. I. L. Neves; M. M. Strieder; A. S. Prata; E. K. Silva; M. A. A. Meireles, “Fructans with different degrees of polymerization and their performance as carrier matrices of spray dried blue colorant”, Carbohydr. Polym., vol. 270, pp. 118374, Oct. 2021. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2021.118374
dc.relation/*ref*/W. Pino Chalá; J. E. Guerrero; A. Castro Rivas; A. A. Castro; J. A. Palacios; A. Castro, “Extracción artesanal de colorantes naturales, una alternativa de aprovechamiento de la diversidad biológica del Chocó, Colombia”, Acta Biológica Colombiana, vol. 8, no. 2, pp. 95-98, Jul. 2003. https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/26674
dc.relation/*ref*/UNE, Tecnología gráfica. “Control del proceso para la elaboración de separaciones de color, pruebas e impresos tramados” NTC-ISO 12647-2, 2016, España, 2016. https://www.une.org/encuentra-tu-norma/busca-tu-norma/norma/?c=N0056069
dc.relation/*ref*/S. Ren; M. M. Giusti, “Comparing the effect of whey protein preheating temperatures on the color expression and stability of anthocyanins from different sources”, Food Hydrocoll., vol. 124, Part. A, pp. 107273, Mar. 2022. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2021.107273
dc.relation/*ref*/A. J. Meléndez-Martínez; G. Britton; I. M. Vicario; F. J. Heredia, “Relationship between the colour and the chemical structure of carotenoid pigments”, Food Chem., vol. 101, no. 3, pp. 1145-1150, Ene. 2007. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.03.015
dc.relation/*ref*/G. Castillo et al., “Bioproductos para la agricultura: surgimiento y desarrollo en el ICIDCA”, ICIDCA Sobre Los Deriv. Caña Azúcar, vol. XLI, no. 3, pp. 42-51, Sep. 2007. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=223120666006
dc.relation/*ref*/B. Guzmán; D. L. Cruz; J. A. Alvarado; P. Mollinedo, “Cuantificación de saponinas en muestras de cañihua Chenopodium pallidicaule aellen”, Rev. Boliv. Quím., vol. 30, no. 2, pp. 131-136, Dic. 2013. http://www.bolivianchemistryjournal.org/QUIMICA%202013B%20PDF/4_Canihua-Saponins-UV-Analyses.pdf
dc.relation/*ref*/G. Giacoman Vallejos; J. Oliva Uc; M. Pérez Cortés, “Estudio de la dinámica de sedimentación de lodos mediante un sistema óptico”, Ingeniería, vol. 12, no. 2, pp. 17-29, May. 2008. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=46712202
dc.relation/*ref*/J. O. Uc; G. G. Vallejos; M. P. Cortés, “Estudio de la dinámica de sedimentación de lodos mediante un sistema óptico”, Ingeniería, vol. 12, n. 2, pp. 17-29, 2008. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=46712202
dc.relation/*ref*/Z. L. Sarungallo; P. Hariyadi; N. Andarwulan; E. H. Purnomo; M. Wada, “Analysis of α-Cryptoxanthin, β-Cryptoxanthin, α -Carotene, and β-Carotene of Pandanus Conoideus Oil by High-performance Liquid Chromatography (HPLC)”, Procedia Food Science, vol. 3, pp. 231-243, 2015, https://doi.org/10.1016/j.profoo.2015.01.026
dc.rightsDerechos de autor 2022 TecnoLógicases-ES
dc.sourceTecnoLógicas; Vol. 25 No. 53 (2022); e2165en-US
dc.sourceTecnoLógicas; Vol. 25 Núm. 53 (2022); e2165es-ES
dc.source2256-5337
dc.source0123-7799
dc.subjectFlavonoidsen-US
dc.subjectcoloranten-US
dc.subjectcolorimetryen-US
dc.subjectCrescentia cujete L.en-US
dc.subjectspectrophotometryen-US
dc.subjectColorantees-ES
dc.subjectcolorimetríaes-ES
dc.subjectCrescentia cujete L.es-ES
dc.subjectespectrofotometríaes-ES
dc.subjectflavonoideses-ES
dc.titleEvaluation of the Extraction of Calabash Tree (Crescentia cujete L.) Colorant for Textile Productsen-US
dc.titleEvaluación de la extracción del colorante de totumo (Crescentia cujete L.) en un producto textiles-ES
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/article
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.typeResearch Papersen-US
dc.typeArtículos de investigaciónes-ES

Archivos

Bloque original

Mostrando 1 - 4 de 4
Miniatura
Nombre:
revistatecnologicas_2165-MUB-VF.docx.pdf
Tamaño:
791.48 KB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descargar
Miniatura
Nombre:
ojsitm_344270031008.epub
Tamaño:
863.38 KB
Formato:
Electronic publishing
Descargar
Miniatura
Nombre:
ojsitm_344270031008.xml
Tamaño:
84.06 KB
Formato:
Extensible Markup Language
Descargar
Miniatura
Nombre:
2392.html
Tamaño:
128.22 KB
Formato:
Hypertext Markup Language
Descargar

Colecciones

Revista TecnoLógicas - Cosecha Portal de Revistas